Contactame

Facebook: www.facebook.com/m3xar
Gmail: draculemihawk1998@gmail.com
Skype: spectrec98
Ask: ask.fm/spectrec

Pestañas

sábado, 29 de noviembre de 2014

Método de Baermann

Método de Baermann
¿Qué aprendí?

Como siempre me digo a mi mismo cada práctica es una nueva experiencia que realizas dentro de tu formación ya sea profesional o técnica como lo queramos plantear.

Lo que yo aprendí esta vez al realizar una nueva técnica parasitológica denominada originalmente como “Método de Baermann”, fue que en cuestión de estudios para determinar la presencia de parásitos en el organismo de una persona no solo existen las técnicas como el coproparasitoscopico directo o las técnicas de flotación por sulfato de zinc, sacarosa o salmuera, así como también las técnicas de concentración ya sea por flotación o por sedimentación, sino que también existen métodos más complicados como lo es el ya mencionado anteriormente, para poder dar un diagnóstico más confiable y correcto y así sustentar tus resultados con un buen procedimiento.

También aprendí esta vez a realizar un procedimiento nuevo de una práctica tan interesante como la es el Método de Baermann que llevamos a cabo esta vez en el laboratorio, esto me ayudó no solo a conocer más sobre los estudios de laboratorio sino también a darme más experiencia en el ámbito practico dentro de lo que es la especialidad que tengo, para así poder llegar con una buena formación a niveles escolares más avanzados como lo son los estudios universitarios o en caso de que decida irme a trabajar terminando el CBTis tener experiencia laboral dentro de las actividades que podemos desempeñar posteriormente en cualquier momento de nuestra carrera.

Por supuesto no me olvide de también obtener más conocimientos con relación a los trabajos en equipo pues es ocasiones tenemos muchas diferencias con nuestros compañeros de laboratorio pero sabiendo organizarnos y teniendo una buena comunicación entre todos podemos sobrellevar las situaciones de problemas que se nos presenten dentro de lo que son las prácticas de laboratorio.

En conclusión puedo resumir que esta práctica me deja los mismos conocimientos que cualquier otra cuyo procedimiento o fundamento no conocíamos hasta el momento pues siempre es muy bueno aprender algo nuevo para así poder ser una persona íntegra en diferentes aspectos de tu vocación y no solo estancarte dentro de lo que es un solo tipo de procesos.

¿Cómo lo hice?

-Está técnica permite una buena concentración de las larvas vivas de Strongyloides, partiendo de un volumen grande de heces. Es demasiada engorrosa para ser empleada como técnica de rutina, pero es excelente para constatar los resultados del tratamiento. Existen diferentes modos de montarla, con igual resultado y diferentes costos.


Primero pedimos todo el material que se iba a ocupar en las 2 prácticas diferentes que íbamos a realizar las cuales fueron “Técnica de Kato” y “CPS directo” ya que teníamos que comprobar mediante diferentes tipos de técnicas los resultados de la muestra, fueran positivos o fueran negativos.

Como segundo paso, extendimos el papel de estraza en el área de trabajo en la cual íbamos a realizar nuestras prácticas ya mencionadas anteriormente, en este caso nosotros íbamos a trabajar en una de las tarjas del laboratorio para así no manchar con material fecal ninguna de las mesas de trabajo y  así mantener nuestro entorno limpio.

Después identificamos el vaso que contenía la muestra con la cual íbamos a trabajar.

Como siguiente paso, con un abate lenguas tomamos un poco de la materia fecal que contenía el frasco que se llevó y la extendemos de manera delgada y fina sobre un trozo de papel filtro.  


Posteriormente cubrimos esta preparación con una gasa y la amarramos con un hilo para así asegurar que está no se abrirá.


Después llenamos un vaso de precipitado con agua y la calentamos hasta conseguir que está estuviera a 37° C.


Posteriormente colocamos dentro del embudo la gasa con la preparación realizada anteriormente y después vaciamos el agua en el embudo hasta llenarlo 3 cm debajo del tope.


Después esperamos una hora mientras las larvas migraban desde las heces hasta el agua, cayendo hasta el fondo de embudo.


Ya que pasó la hora vaciamos un poco del líquido obtenido dentro de 2 tubos de ensaye y los centrifugamos a 10 000 rpm x 10 minutos.


Después al terminarse de centrifugar nuestra preparación con una pipeta obtuvimos un poco del sobrenadante y los colocamos en un porta objetos limpio y rotulado (se observaron 2 veces una con Lugol y la otra así nada mas).


            Por último observamos al microscopio a 10x y 40x para en caso de un positivo poder apreciar los detalles morfológicos de las larvas.


Resultados: Esta muestra después de realizarle la prueba resultó ser negativa pues solo contenía restos de fibras.

¿Qué problemas tuve?

Los problemas que se nos presentaron esta vez como el equipo que somos no fue más que el tiempo que se nos dio para poder llevar a cabo la práctica ya que el Método de Baermann es un método muy tardado pues se debe dejar emigrar las posibles larvas de las heces al agua que se encuentra en el embudo, por otro lado las técnicas de Willis y la de sacarosa no son tan tardadas pero si son algo tediosas para realizarlas al mismo tiempo, además de que al principio no nos pusimos de acuerdo con las tareas que realizaría cada miembro del equipo con respecto a las practicas antes mencionadas que se iban a realizar ese mismo día en el laboratorio por lo que los pocos problemitas de organización junto con el desarrollo tardado de los procedimientos que se realizaron nos dieron una oportunidad de llevar a cabo con éxito nuestras “misiones” un poco más bajas de lo que teníamos contemplado dentro de nosotros.

De manera individual las dificultades que se me presentaron fue que el cubre bocas que llevaba portando en ese momento se me bajaba a cada rato por lo que era muy molesto estártelo subiendo cada medio minuto, además de un poco la observación pues a pesar de conocer como son las fibras que se pueden encontrar dentro de la materia fecal, mis ojos aún no están acostumbrados al 100% para diferenciar de manera excelente un parásito de una fibra vegetal o animal, y estas fueron las dificultades más sobresalientes que tuve dentro del transcurso de la práctica.

¿Cómo los resolví?

Ya que dentro de la práctica había algunos puntos que no comprendíamos tuvimos que leer detenida y cuidadosamente este procedimiento hasta que nos quedara muy claro lo que teníamos que hacer para así no estar realizando errores que afectaran nuestros resultados y poder entregar resultados confiables y precisos, también se presentó el problema del tiempo dentro de la práctica del Método de Baermann, las técnicas de Willis y la de sacarosa, la solución fue que teníamos que realizar el procedimiento lo más rápido posible para que así diera tiempo a que este se aclarara y así poder observarlo al microscopio para posteriormente poder dar un resultado bueno y sin errores.

            Dentro de los problemas dentro del equipo la solución fue que todos nos pusimos serios y en orden para así poder entender y oír las opiniones de cada uno de los miembros del equipo para así poder encontrar una solución colectiva con respecto al problema antes planteado con relación a la mala organización dentro del equipo en un principio de la práctica, pero con calma y paciencia todo se pudo arreglar y pudimos trabajar de una manera muy coordinada y buena para que así pudiéramos realizar todas nuestras prácticas dentro del tiempo establecido por el horario correspondiente a la materia.

            De manera individual la manera en la que sobre llevé los problemas fue tranquilizándome y poniendo de mi parte como jefe de equipo para así repartir las tareas de cada uno de los integrantes del equipo y poder realizar con éxito esta práctica y no fallar.

No hay comentarios.:

Publicar un comentario

 
Powered By Blogger
 
Blogger Templates